体外培养细胞的染色体标本制备
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1.体外培养的细胞，在倒置镜下观察到有较多的分裂细胞（传代后24小时,圆形发亮的细胞）时，加入秋水仙素溶液，终浓度为0.3μɡ/ml培养液；
2.继续培养4小时；
3.胰酶消化收集细胞——>离心管；
4.离心1000转/每分钟，离心8分钟，去上清；
5.Hank's液洗，离心，去上清；
6.低渗处理：加入0.075M Kcl溶液10ml搅匀，37ºC置30分钟，用吸管稍吹打；
7.离心，去上清；
8.固定：加入固定液（甲醇：乙酸=3：1）10ml，沿管壁慢慢加入，吹打均匀，室温置15分钟；
9.重复步骤7、8；
10.离心，去上清；
11.加入少许（视细胞多少而定）新鲜固定液，制成细胞悬浮液；
12.滴片：（玻片要事先洗净，泡蒸馏水，置4ºC冰冻处理备用），火焰烘干或气干；
13.60ºC烤片14小时以上；
14.染色体G显带处理：A.片子经0.025%胰酶37°C处理约15-30秒（看具体情况而定）PH：±7.2；B.冲洗；C.染色10分钟（磷酸缓冲液PH7.2-7.4配Giemsa溶液）；
15.晾干；
16.镜检分析；
17.显影摄影与核型分析。
注意：
1.秋水仙素加入时间不宜过长，太长染色体变短。
2.低渗时间稍短，太长细胞易破碎。
3.滴片越高越好，靠高度破裂细胞。
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